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在當(dāng)前的計算機(jī)網(wǎng)絡(luò)環(huán)境下，網(wǎng)絡(luò)安全已經(jīng)成為一個必須要關(guān)注的問題。攻擊者可以通過多種方法入侵我們的系統(tǒng)，盜取個人信息，破壞我們的網(wǎng)絡(luò)設(shè)備，甚至是加入到一個惡意網(wǎng)絡(luò)中成為攻擊者的一分子。因此，網(wǎng)絡(luò)身份驗證成為了最為基本的保障措施之一。在商業(yè)和機(jī)構(gòu)中，構(gòu)建高魯棒性的身份認(rèn)證系統(tǒng)更是至關(guān)重要。而linux nast正是一款完全開源、自由及可控的網(wǎng)絡(luò)身份驗證解決方案。在本篇文章中，我們將會探究Linux NAST的基礎(chǔ)及特性。
目前創(chuàng)新互聯(lián)已為上千余家的企業(yè)提供了網(wǎng)站建設(shè)、域名、網(wǎng)頁空間、網(wǎng)站托管運(yùn)營、企業(yè)網(wǎng)站設(shè)計、普寧網(wǎng)站維護(hù)等服務(wù)，公司將堅持客戶導(dǎo)向、應(yīng)用為本的策略，正道將秉承"和諧、參與、激情"的文化，與客戶和合作伙伴齊心協(xié)力一起成長，共同發(fā)展。
基礎(chǔ)概念
NAST全稱Network Authentication, Sensing and Trust，即“網(wǎng)絡(luò)身份認(rèn)證、感知和信任”. 它是一組網(wǎng)絡(luò)身份驗證和訪問控制解決方案. 它允許系統(tǒng)管理員在無線和有線網(wǎng)絡(luò)環(huán)境中輕松地控制端對端對等通信. 特別是對工業(yè)控制環(huán)境、企業(yè)聯(lián)網(wǎng)、智能家居等領(lǐng)域下的物聯(lián)網(wǎng)設(shè)備，NAST作為一個重要的組成部分在網(wǎng)絡(luò)安全的發(fā)展中扮演了不可替代的角色。
NAST工作機(jī)制
在網(wǎng)絡(luò)中，我們使用NAST來控制無線局域網(wǎng)或者有線局域網(wǎng)的安全進(jìn)行訪問控制，而這個訪問控制則是基于NAST物理層地址（MAC地址）的。
在NAST中，我們使用了兩個元素來控制訪問權(quán)限。之一個元素是MAC地址，通常用作靜態(tài)分配，而第二個元素是SSL/TLS證書，用于動態(tài)分配。此外，還可以在MAC地址和SSL/TLS證書之間切換以實現(xiàn)不同的身份驗證方式。從而在網(wǎng)絡(luò)環(huán)境中實現(xiàn)高效的訪問控制。
NAST解決方案特性
快速而高效的認(rèn)證
在NAST解決方案中，管理員可以通過批量處理將SSL/TLS證書導(dǎo)入到系統(tǒng)中。這種方式可以大幅提升身份驗證的效率，同時減少無效的身份驗證請求，從而大幅提升整個網(wǎng)絡(luò)系統(tǒng)的性能。
多種身份驗證方式
作為一種靈活可配置的網(wǎng)絡(luò)身份驗證方案，NAST可以通過采用多種身份驗證方式來優(yōu)化身份驗證的效果。管理員可以選擇MAC地址驗證、證書驗證、用戶名和密碼驗證等方式。這些方案可以靈活適應(yīng)不同網(wǎng)絡(luò)場景，從而提升網(wǎng)絡(luò)安全性和易用性。
強(qiáng)大的訪問控制
NAST的訪問控制針對物理和邏輯層，可以在各個層面上丈量規(guī)定請求者的訪問權(quán)限。同時，NAST還提供細(xì)粒度的訪問控制規(guī)則，使得管理員可以對不同用戶或設(shè)備應(yīng)用不同的訪問規(guī)則，從而滿足特定的網(wǎng)絡(luò)安全需求。
可擴(kuò)展性
在網(wǎng)絡(luò)中，NAST的作用不僅僅在于認(rèn)證與訪問控制，同時還可以提供網(wǎng)絡(luò)管理、防火墻保護(hù)等方面的支持。管理員可以通過定制化的方式擴(kuò)展NAST的功能，實現(xiàn)更多的安全級別保護(hù)和網(wǎng)絡(luò)管理。
結(jié)論
Linux NAST作為一個完全開源、自由及可控的網(wǎng)絡(luò)身份驗證解決方案，為企業(yè)和機(jī)構(gòu)等重要領(lǐng)域下的網(wǎng)絡(luò)設(shè)備和終端用戶提供了高魯棒性的身份認(rèn)證和訪問控制。通過使用NAST，管理員可以在保證網(wǎng)絡(luò)安全的前提下提升用戶體驗和網(wǎng)絡(luò)性能。作為一種靈活可擴(kuò)展的解決方案，NAST也為企業(yè)和機(jī)構(gòu)提供了更高效的網(wǎng)絡(luò)管理和安全防護(hù)。在未來的網(wǎng)絡(luò)安全發(fā)展中，NAST將繼續(xù)發(fā)揮重要而不可替代的作用。
相關(guān)問題拓展閱讀：
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Mothur命令教程
從這個頁面
上查閱的所有命令，根據(jù)個人理解翻譯了一下。個人能力有限，會有不當(dāng)之處。
A-G (查看時請用Ctrl+F快捷鍵)
Align.check
這個命令使你計算16S rRNA基因序列中潛在的錯配堿基對數(shù)目。如果你對ARB(
)的編輯窗口熟悉的話，這與計算~，#，-和=這些符號的數(shù)目相同。用greengenes的二級結(jié)構(gòu)圖譜和esophagus dataset運(yùn)行這個命令。要運(yùn)行這個命令，你必須提供FASTA格式的序列文件。
Align.seqs
這個命令把用戶提供的FASTA格式的候選序列文件對齊到用戶提供的同樣格式的模板序列。通用的方法是：
1.采用kmer searching（
），blastn或suffix tree searching找到每個候選序列的最接近模板
2.在候選序列文件和空位模板序列之間進(jìn)行堿基配對，采用Needleman-Wunsch，Gotoh，或者blastn算法規(guī)則。
3.重新在候選和模板序列對之間插入間隔（空位），采用NAST算法，這樣候選序列就能與原始模板序列兼容。
我們提供了一些16S和18S基因序列的數(shù)據(jù)庫，這些是與greengenes和SILVA隊列兼容的。然而，自定義的任何DNA序列的排列都可以用作模板，所以鼓勵用戶分享他們的排列供其他人使用。普遍來說，進(jìn)行排列是很快的-我們能在3小時內(nèi)將超過186000個的全長序列排序到SILVA排列中，而且質(zhì)量像SINA aligner做的一樣好。另外，這個速率可以由多個處理器加倍。
Amova
分子方差分析（Analysis of molecular variance）是一種傳統(tǒng)方差分析的非參數(shù)模擬。這孝橘種方法被廣泛應(yīng)用在種群遺傳學(xué)以檢測關(guān)于兩個種群的遺傳多樣性不是顯著不同于由這兩個種群的共同聯(lián)合導(dǎo)致的多樣性這樣一個假設(shè)。
Anosim
參考文獻(xiàn)：Clarke, K. R. (1993). Non-parametric multivariate ysis of changes in community structure. _Australian Journal of Ecology_ 18,. 群落結(jié)構(gòu)變化的非參數(shù)多元分析《澳大利亞生態(tài)學(xué)報》
Bin.seqs
這個命令輸出一個fasta格式的文件，其中序列根據(jù)它們所屬的OTU進(jìn)行排序。這樣的輸出也許對一個OTU生成特異性引物有幫助，用來對序列進(jìn)行分類。
Catchall
這漏睜個命令使mothur與Linda Woodard，Sean Connolly和John Bunge開發(fā)的catchall程序連接。獲取更多信息，請參看
。catchall的可執(zhí)行程序必須與你的mothur在同一個文件夾里。如果你是一個Mac或Linux用戶，你必須也安裝了mono，在catchall的網(wǎng)頁中有一個關(guān)于mono的鏈接。
Chimera.bellerophon
采用Bellerophon方法生成一個挑選的優(yōu)先嵌合序列的得分列表。
Chimera.ccode
采用Ccode方法。對每個詞語，在查詢序列和參考序列之間對比距離的差異，以及參考序列與它們自己。
Chimera.check
采用chimeraCheck方法…注意：從RDP模型中，這個方法不能決定一個序列是否是嵌合的，但是讓你決定那些基于產(chǎn)生的IS值的序列。
查看“查詢的序列的左邊到它的最近的匹配的距離+查詢的右邊到它最近的匹配的距離-整個查詢序列到它最近的匹配的距離”，通過多個窗口
Chimera.perseus
這個命令讀取并命名一個fasta文件，輸出潛在的嵌合序列。
Chimera.pintail
采用Pintall 方法。在不同的窗口中查詢一個序列，查看期望的差異與觀察到的差異之間的不同
Chimera.seqs
這個命令已經(jīng)被拆分為6個分離的命令。
目前，mothur執(zhí)行六種方法以確定一個序列是不返慎歲是嵌合的。如果有一個你喜歡看到的算法可以實施，請考慮一下或者貢獻(xiàn)給mothur項目，或者聯(lián)系開發(fā)者，我們將會考慮我們能做什么。
chimera.bellerophon
chimera.pintail
chimera.check
chimera.ccode
chimera.slayer
chimera.uchime
Chimera.slayer
這個命令讀取一個fasta文件和參照文件，并輸出潛在的嵌合序列。原始算法的開發(fā)者建議采用一個特殊的模版參照（例如，gold）。我們用silva參照文件提供silva-based 排列的數(shù)據(jù)庫。你將需要在blast/bin文件夾中有megablast和formatdb可執(zhí)行文件的拷貝，這里blast文件夾與mothur可執(zhí)行程序相鄰。megablast/formatdb的版本可以在這里
Chimera.uchime
這個命令讀取一個fasta文件和參考文件，并輸出潛在的嵌合序列。原始的uchime程序是由Robert C. Edgar編寫的，并且貢獻(xiàn)為公共所有。
Chop.seqs
這個命令讀取一個fasta文件，輸出一個.chop.fasta，包含著修剪的整理的序列。它可以用于排序的和未排序的序列。
Classify.otu
這個命令用來為一個OTU得到一個共有序列分類.
Classify.seqs
這個命令允許用戶使用多個不同的方法把他們的序列分配到他們選擇的分類提綱（輪廓）中。當(dāng)前的方法包括采用一個k-nearest鄰近共有序列和Bayesian方法。分類提綱和參考序列可以在taxonomy outline（
）的頁面中獲得。這個命令需要你提供一個fasta格式的輸入文件和數(shù)據(jù)庫序列文件，還要有一個為了參考序列的分類文件。
Classify.tree
這個命令用來為一個進(jìn)化樹的每個節(jié)點(diǎn)獲得一個共有序列。
Clear.memory
這個命令從內(nèi)存中刪除保存的參考數(shù)據(jù)，你可以在已經(jīng)用以下命令(align.seqs, chimera.ccode, chimera.check, chimera.pintail, chimera.slayer和classify.seqs)之一使用過保存參數(shù)之后使用chear.memory.
Clearcut
這個讓mothur用戶在mothur內(nèi)部運(yùn)行clearcut程序。chearcut程序是由Idaho大學(xué)的Initiative for Bioinformatics和Evolutionary Studies（IBEST）編寫。了解更多clearcut相關(guān)信息，參看
。注意，在版本1.13.0中，clearcut源碼已經(jīng)加進(jìn)mothur，所以你不再需要clearcut的可執(zhí)行程序。當(dāng)然，如果你愿意，你仍可以從這里下載clearcut的可執(zhí)行文件
Cluster
一旦一個距離矩陣讀進(jìn)mothur，cluster命令就能用來給OTUs分派序列。目前，mothur采用三個分簇方式。
最近鄰：從OTU的最相似序列，一個OTU內(nèi)的每一個序列都最多x%的距離
最遠(yuǎn)鄰：一個OTU內(nèi)的所有序列與OTU內(nèi)的所有其它序列最多有X%的距離
平均鄰近：這個方法介于另外兩個算法的中間水平
如果您有一個算法，請考慮一下貢獻(xiàn)給mothur項目。
Cluster.classic
這個命令可用于把序列分配到OTUs.它是cluster的dotur工具，目前mothur采用三個分簇方式。
Cluster.fragments
這個命令需要一個fasta格式的文件，也要提供
一個命名的文件而且當(dāng)一個序列被確定為一個更大的序列的一部分時，列出的與序列名相關(guān)的指明文件就會被合并。
Cluster.split
這個命令用來分配序列到OTUs并輸出一個.list, .rabund, .sabund文件.它把大的距離矩陣拆分為小的部分。
Collect.shared
這個命令給計算器生成一個收集曲線，描繪出不同群落間的相似性或它們的共有豐度。Collector’s curves描繪隨著你樣本增加的個體，豐富度和多樣性的變化。如果Collector’s curves變得與x軸平行，你可以合理的確信你在采樣這個工作上做的很好，并且相信曲線上的最終值。否則，你需要繼續(xù)抽樣（采樣），mothur能為collector’s curves生成數(shù)據(jù)，就像sons做的那樣。當(dāng)時sons將數(shù)據(jù)呈現(xiàn)在sons文件中，實際上不可能被新手分析解讀。mothur解決了許多這樣的問題，因為mothur為每一個估計值產(chǎn)生分離的文件。
Collect.single
Collect.single利用計算器（
）生成collector’s curves，描述了豐度，多樣性和樣本的其他特征。Collector’s curves描繪了你抽取額外的個體時豐度和多樣性的變化。
Consensus.seqs
這個命令可以以兩種方式使用：從fasta文件創(chuàng)建一個共有序列，或者由一個list文件為每個OTU創(chuàng)建一個共有序列。序列必須進(jìn)行排列。
Consensus.seqs的參數(shù)（特征，因素）是fasta, list, name和label
Cooccurrence
這個命令計算四個度量并且測試他們的顯著性以評估是否樣式的存在與否比起那些隨機(jī)期待的有所不同。
Corr.axes
這個命令將會計算在shared/relabund文件中每一行（或列）的相關(guān)系數(shù)，記錄在一個pcoa文件所顯示的軸線上。
Count.groups
這個命令從一個特定的組(group)或者一套組算出序列，從下面這些文件類型：group或者shared文件.
Count.seqs
這個命令計算在一個name文件中的代表性序列所代表的序列的數(shù)目。如果提供了一個group文件，它也會提供使group計數(shù)崩潰。
Create.database
這個命令讀取一個list文件，*.cons.taxonomy, *.rep.fasta, *.rep.names和可選的group文件，并且創(chuàng)建一個數(shù)據(jù)庫（database）文件.
Degap.seqs
這個命令讀取一個fasta文件并輸出一個.ng.fasta文件，它包含所有間隔字符都被移除后的序列。
Deunique.seqs
這個命令是unique.seqs的反向命令，從一個fasta和name文件創(chuàng)建一個fasta文件。
Deunique.tree
這個命令把冗余序列標(biāo)識符重新插入一個唯一的系統(tǒng)樹。
Dist.seqs
這個命令將計算兩個排序的DNA序列間不正確的成對距離。這個方法比通用的DNADIST更好，因為這些距離不是存儲在RAM（隨機(jī)存儲器）中，它們直接打印到一個文件。而且，通過它可以忽略可能不感興趣的“大的”距離。這個命令將產(chǎn)生一個列格式的距離矩陣，這個矩陣與read.dist命令中的“列選項”相互兼容。這個命令也能生成一個phylip格式的距離矩陣。它有多個如何操縱gap比較和末端gap的選項。
Dist.shared
這個命令將會生成一個phylip格式的距離矩陣，描述多個組的差異性。這個命令將會計算任何一個描述群落成員或結(jié)構(gòu)相似性的計算子（calculator）。
Fastq.info
這個命令讀取一個fastq文件，并創(chuàng)建一個fasta和quality文件。
Filter.seqs
filter.seqs從基于一個由用戶定義標(biāo)準(zhǔn)的排列刪除列。例如，生成的與參照排列相對的排列經(jīng)常有一些列的每一個字符是“.”或者“-”。這些列不會包含用于計算距離，因為他們本身沒有信息。通過刪除這些列，計算大量的距離這一過程就會加快。同樣，人們也喜歡用溫和的或強(qiáng)制的屏蔽方式（比如Lane’ mask）屏蔽他們的序列來移除可變區(qū)域。這類屏蔽只在深層次系統(tǒng)進(jìn)化分析時鼓勵使用，而在精細(xì)水平的分析比如需要計算OTUs中不建議。
Get.coremicrobiome
這個命令決定可變數(shù)目的樣本中的OTUs的片段，為了不同的最小相關(guān)豐富度。
Get.current
這個命令允許你找出mothur已經(jīng)為每個類型保存為current的一些文件，你也可以清空current文件。
Get.group
這個命令允許你為儲存在內(nèi)存中的多個樣本的OTU數(shù)據(jù)獲得一個已有的不同群組的目錄。這個特征應(yīng)該在為其它命令使用group選項時有幫助。
Get.groups
這個命令從一個特定group或一套groups選擇序列。group來自以下文件類型：fasta，name，group，list，taxonomy.
Get.label
這個命令是你為當(dāng)前儲存在內(nèi)存中的每行OTU數(shù)據(jù)獲得一個標(biāo)簽的目錄。這個特征應(yīng)該在為其他命令使用label選項時有幫助。
Get.lineage
這個命令讀取一個taxonomy文件和一個分類（taxon），并產(chǎn)生一個新的文件只包含有來自分類的序列。你也許也會把一個fasta, name, group, list或者align.report 文件包括到這個命令中，mothur將會為那些只包含有選定序列的文件生成新的文件。
Get.otulist
這個命令解析一個list文件并且為每一個包含兩列的距離創(chuàng)建一個.otu文件。之一列是OTU數(shù)目，第二列是那個OTU中的序列的列表（list）。
Get.oturep
bin.seqs命令能為所有序列報告OTU號碼（即編號），get.oturep命令生成一個fasta格式的序列文件，為每個OTU只包含一個代表性序列。為每個OTU的定義生成一個.rep.fasta和.rep.names文件。
Get.otus
這個命令選擇出包含有來自一個特定group或一副groups的序列的OTUs.
Get.rabund
這個命令將生成一個rabund文件，它基于你輸入到mothur的OTU數(shù)據(jù)。
Get.relabund
這個命令計算一個樣本中的每個OTU的相對豐富度。它將輸出一個.relabund文件。
Get.sabund
這個命令將產(chǎn)生一個sabund文件，基于你讀入mothur的OTU數(shù)據(jù)。例如，如果你讀入一個list文件，get.sabund將產(chǎn)生對應(yīng)的sabund文件。
Get.seqs
這個命令把一個序列名字的列表（list）和一個fasta，name，group，list或align.report文件生成一個新的文件，只包含在list中出現(xiàn)的文件。這個命令也許用于和list.seqs命令結(jié)合以幫助顯示一個序列結(jié)合。
Get.sharedseqs
這個命令取一個list和group文件并為每個距離輸出一個*.shared.seqs文件。這對于那些情況有用，即你或許對于確定特殊groups中特定的或共有的序列感興趣。這樣接下來你就可以分類。
linux nast的介紹就聊到這里吧，感謝你花時間閱讀本站內(nèi)容，更多關(guān)于linux nast,探究Linux NAST：網(wǎng)絡(luò)身份驗證解決方案,ubuntu檢測mothur安裝成功的命令的信息別忘了在本站進(jìn)行查找喔。
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標(biāo)題名稱：探究LinuxNAST：網(wǎng)絡(luò)身份驗證解決方案(linuxnast)
文章出自：http://fisionsoft.com.cn/article/djjggdh.html
